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Anti-FLAG® M2磁珠

Anti-FLAG® M2磁珠用于捕获FLAG®标签蛋白

Anti-FLAG® M2磁珠提供一种简单、便捷的方法,检测和捕获带有FLAG®肽序列的融合蛋白。这种免疫磁珠是结合Anti-FLAG®鼠单克隆抗体(克隆号M2)的超顺磁铁包覆的4%琼脂糖微珠。Anti-FLAG® M2抗体可识别哺乳动物和细菌细胞中表达的融合蛋白N端、Met-N端或C端的FLAG®八肽序列(N-Asp-Tyr-Lys-Asp-Asp-Asp-Asp-Lys-C)。

Anti-FLAG® M2磁珠结合的融合蛋白可通过多种方法洗脱,包括肽竞争法、酸性法和SDS-PAGE上样缓冲液法。本文对三种洗脱方法进行了比较。使用融合蛋白的质控标准品——FLAG®-BAP N端融合蛋白(P7582)或FLAG®-BAP C端融合蛋白(P7457)作为样品,单独孵育或掺入A431细胞裂解物孵育。

结果表明,3X FLAG®肽(F4799)竞争和酸性pH(2.5-3.0)洗脱法对Anti-FLAG® M2磁珠的洗脱最为高效。其中,用3X FLAG®肽洗脱时,样品需与100-150 ng/µL FLAG肽共同孵育30分钟,酸性洗脱时,与0.1 M甘氨酸-盐酸(pH 2.5-3.0)的孵育时间则不到10分钟。实验另证明了这类磁珠不适合碱性洗脱(pH 8-10),以及延长甘氨酸-盐酸的洗脱时间并不能增加蛋白洗脱量。最后对比分析了使用SDS-PAGE上样缓冲液洗脱的样品。这种洗脱条件较为简单,但由于上样缓冲液中的SDS造成M2抗体变性,凝胶电泳出现了对应anti-FLAG®抗体重链和轻链的条带。

样品制备与亲和纯化

充分重悬Anti-FLAG® M2磁珠(M8823),取20 µL悬液(包含10 µL磁珠量)分装到几个微量离心管中。管子置于PureProteome™磁力架(LSKMAGS08)上,吸附所有磁珠后去除上清。加入200 µL Tris缓冲盐溶液(TBS)平衡磁珠,待与样品孵育(图1)。

使用三种洗脱方法的小规模anti-FLAG® M2磁珠免疫沉淀实验方案。

图 1.使用三种洗脱方法的小规模anti-FLAG® M2磁珠免疫沉淀实验方案。

制备样品和免疫沉淀。将FLAG-BAP™ C端融合蛋白或FLAG-BAP™ N端融合蛋白稀释至终浓度0.6 ng/µL(500 µL样品含300 ng蛋白)。另将FLAG-BAP™融合蛋白以同一终浓度掺入A431细胞裂解物,稀释至总蛋白裂解物浓度为1.6 ng/µL。为了维持磁珠的悬液形式并与500 µL样品充分接触,在旋转混合仪上孵育管子3小时至过夜。孵育后,将所有管子置于磁力架上吸附并去除上清,再用500 µL TBS缓冲液洗涤3次。采用三种方法洗脱蛋白:

  1. 竞争法洗脱。磁珠中加入50 µL 100 ng/µL的3X FLAG®肽,在水平摇床上室温孵育30分钟。
  2. SDS-PAGE上样缓冲液洗脱。加入20 µL 2X Laemmli上样缓冲液(不含DTT),95°C沸腾10分钟,待用于凝胶电泳。
  3. 酸性、碱性洗脱。加入50 µL甘氨酸-盐酸(pH 2.5-3.0)或甘氨酸-氢氧化钠(pH 8.0–10)溶液,在水平摇床上孵育5-30分钟(具体视实验内容而定)。

孵育后,将全部管子置于磁力架上吸附,取上清(洗脱组分)转移至干净的微量离心管中。酸性洗脱样品应立即加入10 µL的0.5 M Tris-1.5 M NaCl(pH 8.0)溶液中和。

电泳和蛋白质印迹分析

4-12% SDS-PAGE凝胶、200伏、30分钟电泳分离样品。考马斯亮蓝染色凝胶或将电泳蛋白转移至Immobilon®-P PVDF印迹膜上。转移后,用2%脱脂干乳封闭印迹蛋白1小时,再加入封闭缓冲液1:1000稀释的anti-FLAG® M2抗体(F3165)孵育。用TBST缓冲液洗涤印迹3次,再加入1:50,000稀释的山羊抗小鼠IgG HRP(AP124P)孵育1小时。

检测时,所有印迹加入Immobilon® Forte Western HRP底物孵育5分钟,再通过数字成像系统获取图像。

比较FLAG标签融合蛋白的洗脱方法

将两种融合蛋白标准品FLAG-BAP™(N端)和FLAG-BAP™(C端)以及掺入FLAG-BAP™(N端)的A431细胞裂解物与anti-FLAG® M2磁珠孵育结合,再采用三种洗脱方法洗脱。如图2所示,三种方法均能有效洗脱蛋白,但SDS上样缓冲液洗脱后出现了对应anti-FLAG® M2抗体重链和轻链的额外条带。

比较ANTI-FLAG® M2磁珠免疫沉淀的三种洗脱方法。

图 2.比较ANTI-FLAG® M2磁珠免疫沉淀的三种洗脱方法。St=起始材料;3X=3X FLAG®肽,pH=2.5甘氨酸

用甘氨酸-HCl(pH 2.5-3.0)和甘氨酸-NaOH(pH 8-10.6)洗脱8个A431细胞裂解物样品(掺有FLAG-BAP™ N端融合蛋白标准品)。通过电泳和电转印分离洗脱组分。结果表明,anti-FLAG® M2磁珠仅可在酸性条件下洗脱(图3)。

广泛的pH范围(2.5-10.6)条件洗脱,对比3X FLAG®肽洗脱。

图 3.广泛的pH范围(2.5-10.6)条件洗脱,对比3X FLAG®肽洗脱。左图:考马斯亮蓝染色凝胶。右图:ANTI-FLAG® M2抗体的免疫印迹。

为了证明酸性洗脱与磁珠的孵育时间无需长过10分钟,采用0.1 M甘氨酸-盐酸溶液(pH 2.5、2.8和3.0),对不同样品进行不同时间的洗脱孵育。图4表明,蛋白得率与孵育时间无关,并与3X-FLAG肽竞争法洗脱相近。

比较甘氨酸孵育5至30分钟范围的洗脱组分。

图 4.比较甘氨酸孵育5至30分钟范围的洗脱组分。左图:考马斯亮蓝染色凝胶。右图:ANTI-FLAG® M2抗体的免疫印迹。

FLAG®标签抗体、蛋白标准品及亲和纯化工具
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